COL2A1基因编码的是Ⅱ型胶原蛋白α1链,这是组成Ⅱ型胶原蛋白的三条α链之一。Ⅱ型胶原蛋白是软骨组织中的主要结构蛋白,对维持软骨的弹性和功能至关重要。此外,它也存在于玻璃体、内耳和椎间盘等组织中。COL2A1基因的突变会导致一系列遗传性疾病,统称为Ⅱ型胶原蛋白病。
根据Barat-Houari等人在2015年的研究,COL2A1基因的突变可导致一系列罕见的常染色体显性遗传病,表现为骨骼发育不良、身材矮小和感觉缺陷。这些突变主要影响α1链上的甘氨酸残基,从而破坏了胶原蛋白的三股螺旋结构。这些突变在软骨发育不良Ⅱ型(achondrogenesis type II)和软骨发育不良(hypochondrogenesis)中较为常见。而一些导致提前终止密码子的突变则出现在症状较轻的Stickler综合征中。此外,p.(Arg275Cys)的替换突变见于所有COL2A1相关捷克发育不良的患者[1]。
Donoso等人在2003年的研究指出,Stickler综合征(progressive arthro-ophthalmopathy)是一种由至少三个胶原蛋白基因突变引起的遗传性异质性 disorders。最常见的疾病基因是COL2A1,这是一个包含54个外显子的基因,编码Ⅱ型胶原蛋白。至少有17种不同的突变在这个基因中被报道与Stickler综合征有关。从表型上看,它是一种可变表达的疾病,大多数患者表现为广泛的眼和眼部表现,包括听觉、骨骼和口腔面部表现。然而,一些患者没有明显的全身表现。这种现象导致了区分Stickler表型和其他遗传性视网膜变性,如Wagner综合征和雪花视网膜变性。此外,研究发现,Ⅱ型胶原蛋白存在两种形式,由COL2A1基因的第二外显子选择性剪接产生。一种形式称为IIB(短形式),主要在成年软骨组织中表达。另一种形式称为IIA(长形式),主要在眼球玻璃体中表达。因此,第二外显子上的突变可能产生具有最少或无眼部外表现象的Stickler综合征表型[2]。
Higuchi等人在2017年的研究中,报告了一名患有Stickler综合征Ⅰ型的2岁日本男孩,他表现出身材矮小、软腭裂和双侧白内障等症状。尽管最初怀疑为Marshall综合征,但COL11A1基因没有发现突变。8岁时,他的身高为116.2厘米,且口腔面部特征变得不明显。通过对COL2A1基因的分析,发现了一个新的杂合突变(c.1142 G>A, p.Gly381Asp)。此案例突显了COL2A1基因突变在Stickler综合征诊断中的重要性[3]。
Okazaki等人在2019年的研究中,调查了COL2A1基因变异与视网膜格子变性风险之间的关系。他们招募了634名患有视网膜格子变性的日本患者和1694名健康对照者。他们对COL2A1中的13个标记性单核苷酸多态性(SNPs)进行了基因分型。此外,他们还进行了基因型分析,以评估未分型的COL2A1 SNPs的潜在相关性,涉及65个SNPs的基因型分析。研究发现,两个内含子SNPs-rs1793954和rs1635533-与视网膜格子变性显著相关。SNP rs1793954显示C等位基因携带增加疾病风险(p = 0.0016,校正p = 0.021,OR = 1.25)。rs1793954和rs1635533 SNPs之间存在强烈的连锁不平衡(r 2 = 0.99),条件分析表明,rs1793954可以解释rs1635533与疾病之间的关联。这些结果表明,COL2A1基因变异可能与视网膜格子变性的发生有关[4]。
Deng等人在2016年的综述中,总结了COL2A1基因突变与一系列遗传性疾病的关联,称为Ⅱ型胶原蛋白病。至今已报道了16种明确的疾病,这些疾病以常染色体显性或隐性方式遗传。此外,已报道了至少405种突变,从点突变到复杂的重排。这些疾病表现出明显的临床异质性。该综述强调了COL2A1基因突变对这些疾病的影响,并讨论了相关的遗传动物模型,这些模型有助于我们理解这些疾病复杂表型的本质和潜在的发病机制[5]。
Wan等人在2019年的研究中,旨在调查VEGFA、TBX21和COL2A1基因中的单核苷酸多态性在哮喘儿童对吸入性皮质类固醇反应中的作用。他们招募了患有轻至中度哮喘的儿童进行研究。使用SEQUENOM MassARRAY方法对27个SNP基因型进行测序。结果显示,VEGFA rs3025039 T等位基因携带者FEV1的变化小于CC携带者(p = 0.040),而在COL2A1 rs3809324中,T等位基因携带者的频率低于GG携带者(p = 0.048)。rs3025039还与FEV1/FVC的变化相关(p = 0.016)。这些结果表明,VEGFA和COL2A1基因多态性与哮喘儿童对吸入性皮质类固醇的反应显著相关[6]。
Bozhokin等人在2021年的研究中,探讨了低强度光生物调制对软骨生成的影响。他们使用大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)作为细胞模型,比较了低强度He-Ne激光光生物调制和细胞因子Tgfβ3对软骨生成的影响。研究发现,低强度光生物调制和细胞因子Tgfβ3均能促进软骨生成相关基因(tgfβ3、col2a1和sox9)的表达。与Tgfβ3相比,激光照射对软骨生成的促进作用较小。这些结果表明,低强度光生物调制可能有助于促进软骨生成[7]。
Sahlman等人在2004年的研究中,构建了带有Arg519Cys突变的COL2A1基因的转基因小鼠模型。研究发现,与正常小鼠相比,转基因小鼠表现出骨骼异常,包括长骨发育不良、扁平椎体和关节骨关节炎性改变。这些结果表明,COL2A1基因的Arg519Cys突变可能导致小鼠的骨软骨发育不良,这与人类的情况相似[8]。
Rani等人在2003年的研究中,将人源COL2A1基因导入Col2a1基因敲除小鼠中,以探究Ⅱ型胶原蛋白在物种间是否具有保守的生物功能。研究发现,人源COL2A1基因的表达可以挽救敲除小鼠的致死性表型,表明Ⅱ型胶原蛋白的生物功能在人和小鼠之间是保守的。转基因小鼠表现出正常的软骨生成和生长板结构。此外,从这些小鼠的软骨中分离出的软骨细胞分泌了人源蛋白,表明这些小鼠能够将异源蛋白整合到软骨的形成过程中。这些转基因小鼠模型可能有助于研究COL2A1基因突变对人类骨骼发育的影响[9]。
Xue等人在2023年的研究中,通过基因表达谱分析,将膝骨关节炎(OA)分为三种亚型:骨重建亚型(C1)、免疫代谢亚型(C2)和软骨降解亚型(C3)。研究发现,COL2A1在不同亚型中的表达存在显著差异,且与年龄相关。此外,研究发现OA相关基因的表达与临床特征相关。这些结果表明,OA患者存在不同的分子亚型,且OA相关基因的表达与临床特征相关,为OA的诊断和治疗提供了新的思路[10]。
综上所述,COL2A1基因编码的Ⅱ型胶原蛋白在软骨组织和其他组织中发挥着重要作用。COL2A1基因的突变可导致一系列遗传性疾病,包括软骨发育不良和Stickler综合征。此外,COL2A1基因多态性与视网膜格子变性的风险以及哮喘儿童对吸入性皮质类固醇的反应相关。低强度光生物调制可能有助于促进软骨生成。COL2A1基因突变的转基因小鼠模型有助于研究COL2A1基因突变对人类骨骼发育的影响。OA患者存在不同的分子亚型,且OA相关基因的表达与临床特征相关。这些研究结果有助于深入理解COL2A1基因的功能和突变引起的疾病发生机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Barat-Houari, Mouna, Sarrabay, Guillaume, Gatinois, Vincent, Genevieve, David, Touitou, Isabelle. 2015. Mutation Update for COL2A1 Gene Variants Associated with Type II Collagenopathies. In Human mutation, 37, 7-15. doi:10.1002/humu.22915. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26443184/
2. Donoso, Larry A, Edwards, Albert O, Frost, Arcilee T, Meyer, David, Parma, Scott. . Clinical variability of Stickler syndrome: role of exon 2 of the collagen COL2A1 gene. In Survey of ophthalmology, 48, 191-203. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12686304/
3. Higuchi, Yousuke, Hasegawa, Kosei, Yamashita, Miho, Tanaka, Hiroyuki, Tsukahara, Hirokazu. 2017. A novel mutation in the COL2A1 gene in a patient with Stickler syndrome type 1: a case report and review of the literature. In Journal of medical case reports, 11, 237. doi:10.1186/s13256-017-1396-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28841907/
4. Okazaki, Shinya, Meguro, Akira, Ideta, Ryuichi, Ideta, Hidenao, Mizuki, Nobuhisa. 2019. Common variants in the COL2A1 gene are associated with lattice degeneration of the retina in a Japanese population. In Molecular vision, 25, 843-850. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31908402/
5. Deng, Hao, Huang, Xiangjun, Yuan, Lamei. 2016. Molecular genetics of the COL2A1-related disorders. In Mutation research. Reviews in mutation research, 768, 1-13. doi:10.1016/j.mrrev.2016.02.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27234559/
6. Wan, Zan, Tang, Yongjun, Song, Qianqian, Liu, Chentao, Liu, Jie. . Gene polymorphisms in VEGFA and COL2A1 are associated with response to inhaled corticosteroids in children with asthma. In Pharmacogenomics, 20, 947-955. doi:10.2217/pgs-2019-0036. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31486735/
7. Bozhokin, M S, Vcherashnii, D B, Yastrebov, S G, Zherebtsova, Ju V, Khotin, M G. 2021. Low-intensity photobiomodulation at 632.8 nm increases tgfβ3, col2a1, and sox9 gene expression in rat bone marrow mesenchymal stem cells in vitro. In Lasers in medical science, 37, 435-441. doi:10.1007/s10103-021-03279-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33634352/
8. Sahlman, Janne, Pitkänen, Marja T, Prockop, Darwin J, Puustjärvi, Kaija, Lammi, Mikko J. . A human COL2A1 gene with an Arg519Cys mutation causes osteochondrodysplasia in transgenic mice. In Arthritis and rheumatism, 50, 3153-60. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15476249/
9. Rani, P U, Stringa, E, Dharmavaram, R, Tuan, R S, Khillan, J S. . Restoration of normal bone development by human homologue of collagen type II (COL2A1) gene in Col2a1 null mice. In Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists, 214, 26-33. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9915573/
10. Xue, Yuan, Zhou, Liang, Wang, Jiaqian. 2023. Classification of distinct osteoarthritis subtypes with different knee joint tissues by gene expression profiles. In Bone & joint research, 12, 702-711. doi:10.1302/2046-3758.1212.BJR-2023-0021.R2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38035595/